大鼠活体注射建模DAB操作步骤

大鼠活体注射建模DAB操作步骤

该实验操作指南是将1 型小鼠PFFs (SPR-324) 或1 型人PFFs (SPR-322) 注射到大鼠脑中来产生alpha突触核蛋白病理特征。小鼠PFFs显示出了更强的聚集效果。

使用的动物: 雌性SD (Sprague Dawley) 大鼠

2 uL PFFs 或者单体 (阴性对照) 通过以下两个脑顶叶区的位置注射:

•AP + 1.6, ML + 2.4, DV – 4.2

•AP – 1.4, ML + 0.2, DV – 2.8

30天后, 用生理盐水灌注大鼠然后在大鼠脑冠状平面切开,将中脑与前脑分开。之后两部分都用4% PFA 固定 48 小时.

DAB 操作步骤

材料

•1X TBS (含有和不含有 TX-100的)

•30% H2O2

•柠檬酸缓冲液

•驴血清 (保存在 -20℃; 冻融稳定的)

•一抗: pSYN EP1536Y (Abcam; ab51253)

•二抗: 生物素-SP (long spacer) AffiniPure 驴抗兔 IgG (H+L) (Jackson Immuno; 货号: 711-065-152)

•ABC 试剂 (Vector; 货号: PK-7100)

•DAB 试剂 (Vector; 货号: SK-4100)

•孔板 (规格取决于要染色的区域数量)

•漆刷

•玻璃钩

•漂白剂

•ddH20

•BD Luer-lock 注射器 10 mL

•过滤器 0.22 uM 孔径 (Fisher 货号. SLMP025SS)

•100% EtOH

•Histoclear (用于清理组织)

•显微镜载玻片和盖玻片

•Permount (封片剂)

 

第一天:    (猝灭, 抗原修复, 阻断, 一抗)

-用 1X TBS (震荡, 室温)冲洗切片 5 次以除去冷冻保护剂。

-把切片放到 0.6% H2O2 的 TBS 中,覆盖好,置于操作台20分钟。

*该步骤不要用MESH WELLS*

用 _______ mL TBS, _______ uL 30% H2O2

-用 1X TBS (震荡, 室温) 冲洗切片3次。

-做抗原修复时, 提前在水浴中预热柠檬酸缓冲液至少15~30分钟。在柠檬酸缓冲液中培养切片一小时,将温度设置为37℃,不要震荡 。

-用 1X TBS (震荡, 室温) 冲洗切片3次。

-阻断时, 将切片置于 5% 常规驴血清和0.25% Triton-100的TBS 中阻断 1 小时,冷室、震荡。

*注意: 可以使用含有Triton的TBS阻断液 (1 L TBS, 2.5 mL TX-100), 之后只需要向阻断液中加入驴血清来阻断。*

用 _______ mL TBS,

_______ uL 驴血清, _______ uL 10% TX-100

-用 1X TBS (震荡, 室温) 冲洗切片3次。

-用含 5% 驴血清的 TBS制备一抗溶液,稀释度为1:5000。用锡纸包好切片,和抗体一起在冷室中震荡培养过夜。

用 _______ mL TBS,

_______  uL 驴血清, _______ uL pSYN EP1536Y

第二天:    (二抗, ABC 扩大信号, DAB 染色)

-用 1X TBST (震荡,室温) 冲洗切片3次. 余下的步骤中,需要一直将切片保留在锡纸里,即使是冲洗的步骤。

-用含 5% 驴血清的 TBS 制备二抗溶液,稀释度为1:500。在冷室中培锡纸养盖好的切片2小时,震荡。

用 ______mL TBS,

 ______ uL 驴血清, _______ uL 生物素标记的驴抗兔 IgG

-用 1X TBST (震荡,室温) 冲洗切片3次。

-用 ABC 试剂培养切片 30 分钟 (震荡, 冷室)。

-用 1X TBS 冲洗切片 3 次 (震荡,室温)。

-用 falcon 离心管和 ddH2O制备 DAB 溶液,每 5 mL H2O 加入如下溶液然后涡旋混合:

2 滴缓冲溶液

4 滴 DAB 溶液

2 滴双氧水溶液

*注意: 所有接触过DAB的器具只能用来操作DAB。我们还在通风橱内准备了一个DAB专用的废液缸。使用玻璃钩来处理DAB溶液中的切片而不能用漆刷,并且操作后要用漂白剂冲洗玻璃钩。盛装过DAB的器皿都需要用漂白剂冲洗并且处理到生物性危害箱中。*

-用注射器过滤到新的6孔板中。每一个需要染色的脑切片都用一个新的DAB孔。

-在DAB中培养每个切片直到变为浅棕色 (2-3 分钟就足够; 时间太长可能会造成背景染色太多)

-用 ddH2O 冲洗 3 次

-在 1X TBS 中封片,然后在切片柜中干燥过夜。

第三天:    (脱水和盖玻片)

*注意: 在开始脱水步骤之前,确保浸片用的玻璃皿里有足够的液体可以盖过切片上的所有组织。*

-按照如下顺序和时间脱水切片:

1. 30 秒 ddH20

2. 3 分钟 70% EtOH

3. 3 分钟 95% EtOH

4. 3 分钟 95% EtOH

5. 3 分钟 100% EtOH

6. 3 分钟 100% EtOH

*置于振荡器*

7. 5 分钟 Histoclear

8. 5 分钟 Histoclear

9. 5 分钟 Histoclear

-将切片从切片篮从取出,一次一片,置于吸水纸上。

-加封片剂时,取一个P1000 移液器和吸头,将吸头尖剪掉,容量设到400到500 μL.

-连续滴几滴封片剂 Permount 到切片的中间,倾斜切片使封片剂完全覆盖切片。

-用棉棒的木头一端赶出切片中的气泡。

-将切片放在吸水纸上,置于操作台上过夜晾干。

*注意: ~24 小时之后, 多余的Permount 封片剂应该用Histoclear移除*

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细胞复苏的操作步骤及注意事项

细胞复苏的操作步骤及注意事项

平时研究用的细胞,有需要冷冻保存。冷冻的过程称为冻存,把冻上的细胞化开的过程叫细胞复苏。细胞复苏是一简单的试验操作,但操作中有许多需要注意的事项,在实验操作中注意细小问题,才能使复苏后的细胞状态保持良好。

 

细胞复苏实验准备: 

主要器材:一次性滴管、打火机、酒精灯、大镊子、中镊子、记号笔、废液缸、封口膜、剪子。 

主要试剂:PBS、培养液、消化酶(胰酶)、75%酒精、双抗。 

PBS配制:NaCL :4g   KCL:0.1g   Na2HPO4 :1.745g   KH2PO4 :0.1g   

三蒸水:500mL,溶解后高压灭菌。 培养基配制:5mL双抗、50mL血清,加入培养基中。 

细胞复苏操作步骤:

1.佩戴眼镜和手套,从液氮罐中取出安瓿或冷冻管。 

2.迅速放入38℃水浴中,并不时摇动,在1分钟内使其完全融化,然后在无菌下取出细胞。 

3.在1000r/min速度下离心5~10分钟,弃去上层液,加入适量培养液后接种于培养瓶中,接种浓度1×109/L,置37℃温箱静置培养,次日更换一次培养液,继续培养,观察生长情况。若细胞密度较高,及时传代。或无需离心直接将细胞加入瓶中,并加入培养基贴壁培养12~24小时后,充去上清,换入新鲜培养基继续培养。 

细胞复苏的注意事项:

1.细胞复苏时要注意融化冻存细胞的应注意融化冻存细胞速度要快,可不时摇动安瓿或冷冻管,使之尽快通过最易受损的温度段(-5~0℃)。

2.冻存液对细胞有毒性,解冻后必须用Dhanks洗两遍才能移入培养瓶中培养。培养液中血清不能太少。 

3.从液氮拿出来,以最快速度丢入37度水浴,等细胞液刚刚化完取出,加培养液稀释。这样可以避免复苏过程中细胞液中有冰晶的出现,冰晶会破坏细胞膜及细胞内部结构的。 

4.刚复苏的细胞还是少折腾它好,细胞37°快速解冻后直接放入预热的培养基。 

5.DMSO在4度以下对细胞无毒,4度以上有毒;复苏必须尽快除去。要记得慢冻速溶! 

6.取细胞的过程中注意带好防冻手套,护目镜。细胞冻存管可能漏入液氮,解冻时冻存管中的气温急剧上升,可导致爆炸。 

7.常温下二甲基亚砜(DMSO)对细胞的毒副作用较大,因此,必须在1-2 min内使冻存液完全融化。如果复苏温度太低,会造成细胞的损伤,所以选择40℃复苏。

8.贴壁细胞复苏实验标准流程是将解冻后的细胞悬液先进行离心,以去除冷冻保护液DMSO对细胞的损伤,但是离心也会对刚复苏的状态欠佳的细胞产生损伤。也有的实验操作是将解冻后的细胞悬液先直接吹打均匀后分装到培养瓶中进行培养,第二天换液。这可能使培养基中少量的DMSO对细胞造成损伤。 

细胞复苏后贴壁细胞较少的原意有哪些: 

1.冻存细胞的时候是不是消化时间过长,这是一般人注意不到的地方,要知道太长的消化时间会使细胞复苏时失去贴壁能力。 

2.有可能是细胞冻存液的质量,细胞冻存液的质量不好也会导致细胞死亡。 

3.冻存液的量加的是不是太多,ATCC推荐是不超过7%,大于5%,太多也不好。 

4.冻存的时候是不是把DMSO混均匀,这个有一些影响,但不算太大。 

5.冻存时温度梯度是不是把握严格,很多人容易忘却这个事情,因为这个东西流程长。

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