免疫荧光(IF)实验步骤

免疫荧光(IF)实验步骤

免疫荧光(IF)实验步骤的一般流程:

1.用聚乙烯亚胺或多聚赖氨酸涂覆盖玻片,在室温下放置 1 小时。

2. 用无菌水充分漂洗盖玻片3 次,每次1 小时。

3. 充分干燥盖玻片,在紫外光下灭菌至少4 小时。

4. 使细胞在玻璃盖玻片上生长。

5. 用磷酸盐缓冲液(PBS) 简单漂洗。 推荐使用1 × PBS 0.1% Tween 20 作为洗涤缓冲液。

固定 

可使用以下两种方法中的一种固定细胞: 

1.室温下,在100% 甲醇(-20 ℃ 冷冻)中孵育细胞5 分钟。

2. 室温下,在4% 多聚甲醛(溶于 PBS 中,pH 7.4)中孵育细胞 10 分钟。 用冰PBS 洗涤细胞3 次。 

抗原修复(可选步骤) 

在抗原修复缓冲液对细胞进行加热处理后,有些抗体的效果会更好。查看产品信息,了解每种一抗的使用建议。

1. 将抗原修复缓冲液(100 mM Tris,5% [w/v] 尿素,pH 9.5)预热至 95 ℃。具体方法为:将装有缓冲液的盖玻片染色缸置于水浴锅中,水浴锅的温度设 为 95 ℃。

2. 用小型宽头镊子小心将盖玻片置于盖玻片染色缸内的抗原修复缓冲液中,记下长 有细胞的盖玻片面。 

3. 在 95 ℃ 下加热盖玻片10 分钟。 

4. 从抗原修复缓冲液中取出盖玻片,浸入 6 孔组织培养板内的PBS 溶液中,保持 长有细胞的一面朝上。 

5. 用 PBS 洗涤细胞3 次,每次5 分钟。 

通透 

1.如果靶蛋白位于细胞内,对细胞进行通透处理尤为关键。用甲醇固定的样品不需要进行 通透处理。 用PBS(含 0.1–0.25% Triton X-100 或 100 μM Digitonin 或 0.5% Saponin)孵育样品10 分钟。Triton X-100 是用于提高抗体渗透性最常用的 去垢剂。但 Triton X-100 会破坏细胞膜,因此不适用于细胞膜抗原。

2.确定每种目标蛋白的Triton X-100 最佳比例。

3.用 PBS 洗涤细胞3 次,每次5 分钟。 

封闭与免疫染色 

1.用 1% BSA、22.52 mg/mL 甘氨酸的PBST (PBS + 0.1% Tween 20) 孵育细 胞30 分钟,封闭抗体的非特异性结合(可替代的封闭液包括 1% 明胶或来源于产生 二抗的物种的10% 血清:查看抗体数据表了解相关建议)。

2.室温下,用稀释抗体(溶于 1% BSA 的PBST 中)在湿盒中孵育细胞1 小时, 或4 ℃ 过夜孵育。倒出溶液,用PBS 洗涤细胞3 次,每次5 分钟。

3.室温下,用二抗(溶于 1% BSA 中)避光孵育细胞1 小时。

4.倒出二抗溶液,用PBS 避光洗涤细胞3 次,每次5 分钟。

多色染色(可选步骤)

要检测同一个样品中两种或多种抗原的共同分布情况,需要使用双重免疫荧光流程。该流程可在混合物中同时进行检测,也可逐个抗原依次进行检测。 

确保抗体来源于不同物种并且这些抗体有相应的二抗。例如,抗抗原 A 的兔抗体和抗抗 原B 的鼠抗体。也可使用偶联至不同荧光团的直标一抗。

同时孵育

1. 用封闭液孵育细胞30 分钟。

2. 室温下,用两种一抗(溶于 1% BSA 的PBST 中)在湿盒中孵育细胞1 小 时,或4 ℃ 过夜孵育。

3. 倒出溶液,用PBS 洗涤细胞3 次,每次5 分钟。

4. 室温下,用两种二抗(溶于 1% BSA 中)避光孵育细胞1 小时。

5. 倒出二抗溶液,用PBS 避光洗涤细胞3 次,每次5 分钟。

依次孵育 

1. 第一封闭步骤:室温下,用第一封闭液(来源于产生二抗的物种的 10% 血 清)孵育细胞 30 分钟。

2. 室温下,用第一种一抗(溶于 1% BSA 或 1% 血清的PBST 中)在湿盒中孵 育细胞1 小时,或4 ℃ 过夜孵育(一抗溶于 1% 明胶或 1% BSA 的PBST 中)。

3. 倒出第一种一抗溶液,用PBS 洗涤细胞3 次,每次5 分钟。

4. 室温下,用第一种二抗(溶于 1% BSA 的PBST 中)避光孵育细胞1 小时。

5. 倒出第一种二抗溶液,用PBS 避光洗涤细胞3 次,每次5 分钟。

6. 第二封闭步骤:室温下,用第二种血清(来源于产生二抗的物种的 10% 血 清)避光孵育细胞30 分钟。

7. 室温下,用第二种一抗(溶于 1% BSA 或 1% 血清的PBST 中)在湿盒中避 光孵育细胞1 小时,或4 ℃ 过夜孵育。

8. 倒出第二种一抗溶液,用PBS 避光洗涤细胞3 次,每次5 分钟。

9. 室温下,用第二种二抗(溶于 1% BSA 中)避光孵育细胞1 小时。

倒出第二种二抗溶液,用PBS 避光洗涤细胞3 次,每次5 分钟。 

如需检测两种以上的抗原,其余抗体按照步骤1–5 继续操作

复染 

1.用 0.1-1 μg/mL Hoechst 或 DAPI(DNA 染色)孵育细胞 1 分钟。

2. 用 PBS 漂洗细胞。

封片 

1. 用一滴封片介质封闭盖玻片。 

2. 用指甲油密封盖玻片,避免样品变干和在显微镜下移动。 

3. -20 ℃ 或 4 ℃ 下避光保存。

更多详情请咨询上海金畔生物

免疫荧光实验操作指南

免疫荧光实验操作指南

该免疫荧光实验方法仅供参考,由于每个实验使用的试剂不同,并且涉及不同的物种,组织类型及实验应用,实验人员设计应根据具体情况设计实验步骤和改良。

-切片制备

A. 细胞涂片

将培养的细胞生长于无菌的盖玻片或载破片上,37℃过夜孵育。

用PBS简单洗涤。

按需固定. 可用的步骤有:

含10% 福尔马林的PBS 固定10分钟 (保持湿润).

冰冷的甲醇固定5分钟,自然干燥。

冰冷的丙酮固定5分钟,自然干燥。

用PBS冲洗。

B. 冷冻组织切片

在液氮或用液氮预冷的异戊烷中切割冷冻的新鲜组织, 放置于含有OCT冻存液的cryomolds被膜中. 速冻后保存在 – 80 ?C。

用恒冷箱切片机将组织切成4-8 um 厚的切片,然后固定在急冻切片或明胶包被过的切片。使用前将切片保存于 – 80℃。

染色之前,将切片置于室温下 30分钟然后于冰冷的丙酮中固定5分钟。自然干燥30分钟。

在PBS中漂洗。

C. 石蜡组织切片

将切片在二甲苯中去石蜡两次,每次5min.

使用100% 乙醇水化两次,每次3min.

使用95%乙醇水化 1min.

蒸馏水漂洗.

按需根据预制备步骤操作.

-组织切片预制备

*对于非石蜡包埋的冷冻切片和培养细胞,请不要使用该预制备步骤。

被福尔马林固定和石蜡包埋封闭的抗原决定簇可以使用抗原修复剂、酶消化或肥皂精等来使之显示。

-步骤

在PBS-Tween 20 中漂洗切片两次,每次2分钟。

血清封闭: 用正常血清封闭孵育切片 – 物种来源应与二抗相同, 孵育30分钟来封闭非特异的免疫球蛋白结合。 注意:由于该实验使用的 avidin-biotin 检测系统, 根据组织类型不同,可能需要avidin/biotin 封闭,avidin/biotin 封闭应在正常血清封闭之后。

一抗: 在一抗溶液中孵育切片,室温下1小时或4℃过夜。

在PBS-Tween 20中漂洗。

二抗: 在生物素化二抗溶液中孵育切片,室温下30分钟。

用PBS-Tween 20 漂洗三次,每次2分钟。

检测: 在含FITC-Avidin D 的PBS溶液中孵育切片,室温下30分钟。从该步骤开始要确保切片避光,直到最后将切片用铝箔纸包裹或放进避光盒子中。

用PBS-Tween 20 漂洗三次,每次2分钟。

如需要,用PI 或 DAPI 复染色。

在PBS-Tween 20中漂洗。

用95% 乙醇脱水 2 分钟, 100% 乙醇脱水两次,每次3分钟。

用抗褪色固定介质覆盖切片。

如需了解更多免疫荧光实验操作问题及免疫荧光相关产品,请联系上海金畔生物~

免疫荧光染色二抗稀释液

免疫荧光染色二抗稀释液

货号:BL737A

规格:100ml

品牌:biosharp

商品详情:

 

免疫染色二抗稀释液

 

产品简介:

免疫荧光染色二抗稀释液是免疫荧光实验(Immunofluorescence,IF)中的常用试剂,因为抗体为了保证其标记物具有较高的活性,所以一般都是以较高的浓度保存运输,在免疫染色中为了获得较好的染色效果都需要对抗体进行适当的稀释。经本产品稀释的荧光二抗4℃保存6个月,可反复使用。

 

使用方法:

1. 本产品无需稀释,开盖即用。

2. 按照抗体使用说明,根据比例稀释即可。

 

注意事项:

1.本产品属蛋白制剂,室温放置过久易导致蛋白的降解和活性丧失。

2.反复冻融亦会导致蛋白活性的丧失。

3.本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。

4.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

 

保存条件:

4℃保存,6个月有效。

货号 BL737A
规格 100ml
品牌 biosharp
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