链霉亲和素(安捷伦)使用窍门与技巧

链霉亲和素(安捷伦)使用窍门与技巧

在使用安捷伦链霉亲和素产品的时候,可能很多客户对有些部分不知道怎么使用,或者对产品有一些问题疑惑。那通过本文讲解链霉亲和素使用窍门与技巧,就能帮助大家解决这些问题了。当然,更多关于链霉亲和素使用的问题,如本文没提及到,可以联系我们上海金畔生物。

1.我可以用水溶解冻干链霉亲和素吗?还是必须用 PBS?

链霉亲和素易溶于水或含盐缓冲液,浓度高达 50 mg/mL 以上。在中性或酸性 pH 条件下,冻干链霉亲和素在重新溶解于水或其他低离子强度缓冲液时,可能会发生聚集。安捷伦链霉亲和素已在弱碱性 pH 下从稀氯化钠溶液中冻干,从而尽可能减少聚集体的形成。在极少数情况下,链霉亲和素在溶于去离子水或低离子强度缓冲液时可能含有少量的不溶物质,无论是在最初溶解时还是在冻融循环后。在含盐缓冲液(例如 PBS)存在的情况下,通常观察不到这种效果。如果观察到未溶解物质,可以通过离心将其去除,它们不会构成总蛋白质的重要部分。

2.如何复溶链霉亲和素以避免形成聚集体?

对于 1 g 或 100 mg 溶液瓶,我们的标准技术是加入足量的缓冲液,使其溶解至 20–50 mg/mL,然后立即开始旋转溶液瓶。例如,您可以将溶液瓶放在工作台上,并以紧密的圆周运动方式将其迅速移动。继续旋转直到蛋白质溶解,这可能需要几分钟,从而尽可能减少聚集体的形成。如果之后有一点混浊,请先通过离心将其去除再使用该材料。当以这种方式溶解时,离心后的回收率应与溶液瓶上显示的 A280 测量结果一致。

在溶于水或低离子强度缓冲液时,避免聚集体形成是最重要的一点(如 SA10 技术数据表中所述)。在 PBS 和更高离子强度缓冲液中复溶链霉亲和素似乎对持续搅动不太敏感。然而,即使在使用 PBS 时也不要只是添加缓冲液,让溶液瓶保持不动,然后等待链霉亲和素溶解。对于分配到微量离心管中的 10 mg 样品和其他样品,添加足量的缓冲液使其溶解至 5–50 mg/mL。然后通过上下移液进行混合,直到观察到内容物已经溶解。对于这样的少量样品,复溶非常迅速。

3.产品中是否含有盐等添加剂?

安捷伦链霉亲和素以冻干形式提供,每毫克冻干产品含有约0.9 mg 蛋白质;其余为氯化钠。因此,每毫克冻干产品含有0.1 mg 氯化钠 (10%)。但我们按蛋白质含量进行分配,如果您购买一克链霉亲和素,您将收到一克链霉亲和素和额外的盐,而不是总共一克冻干产品。我们提供 NaCl 的含量信息,为称量产品的客户提供参考。

4.在SDS-PAGE 凝胶上观察到的 SA10 链霉亲和素分子量应该为多少? 

(分析证书指出该产品应主要作为 SDS-PAGE 的单一条带运行。)

链霉亲和素是分子量约为 52 kDa 的同源四聚体。随着SDS-PAGE 样品缓冲液中的热变性,链霉亲和素四聚体

分解为单体,在 SDS-PAGE 凝胶上以约 13 kDa 运行。在SDS-PAGE 处理之前,必须将链霉亲和素加热至沸腾(例如,在含有 0.2% SDS 的上样缓冲液中于 100 °C 下加热 20 分钟),使蛋白质完全变性。否则,四聚体可能无法完全分解为单体,SDS-PAGE 上可能出现四聚体形式。链霉亲和素中没有半胱氨酸残基(因此没有二硫键),因此样品缓冲液中是否存在还原剂(如 DTT 或 β-巯基乙醇)不会有什么不同。

更多详情请咨询Agilent中国代理商-上海金畔生物

如何更好的使用ELISA试剂盒?

如何更好的使用ELISA试剂盒?

在使用ELISA试剂盒的过程中有很多常见的问题。比如说:加样器不确,尤其10ul以下的加样器,对结果影响极大、保温设备不良、洗涤用水不规范等。那么如何解决这些问题呢?下面小欣为您介绍以下几点使用方法:

1.认真阅读使用说明书(建议实验操作前就先看一遍,而不是第一次操作时就按照说明书进行实验)。

2.在使用过程校正加样器;10ul以下加样器采用进口产品;

3.仔细校正温度到37℃,水浴箱为佳;

4.必须使用去离子水或蒸馏水,不得用自来水、矿泉水等。

5.样品加样

(1)加样时一定要仔细。加样后,再检查,以防漏加、错加。

(2)加样后,反复抽吸3次混匀,防止血清聚集孔底,导致非特异性吸附。

6.洗涤

(1)每次注水洗涤,应静止30秒钟;

(2)选用吸水纸作为衬垫,每次洗涤后扣干孔内水分;

(3)可选用塑料洗涤瓶。

7.加酶反应

(1)包括阴性对照孔在内,各孔显色普遍偏深;

(2)包括阳性对照在内,各孔均无显色;

(3)阳性对照不显色,而其它样本显色正常;

(4)有些标本显色不深,判断阳性困难。

希望以上方法能够帮助到大家,关于更多产品信息,技术的问题,大家可以前来咨询我们上海金畔生物,我们有专业的技术人员,会给予您合理的建议。

DAB染色液的使用方法及注意事项

DAB染色液的使用方法及注意事项

DAB染色液用于免疫组化染色,应用在Dako 自动染色系统上。 

DAB染色液的使用方法:

1.DAB显色液配制 10mM Tris-HCl (pH7.6)   9mL  +DAB (diaminobezidin 3,3-二氨基联苯胺) +0.3%(W/V)  NiCl2 或CoCl2   1mL ,显色时加入5-10mL 30%H2O2 混匀后立即使用  

2. 显色 准备好含有待测蛋白的固相膜:包括电泳、转印、封阻、一抗(或生物素)处理、辣根过氧化酶(HRP)标记的二抗(或链霉亲和素)处理、清洗等步骤。  

3.加入适量的DAB显色液,铺满整个固相膜表面(可按比例增减)。  

4. 置于平式摇荡仪上,在室温下孵育2至5分 钟,避免光照(暗室操作),直至棕褐色沉淀出现。  

5.用镊子夹起固相膜,放进无离子水里清洗。   

6.空气中晾干。   

7. 拍照记录 。 

DAB染色液的注意事项:

1. DAB溶液应低温密封保存。如有结晶析出,应确保结晶完全溶解再行使用;  

2. 显色工作液应现用现配,新鲜配制的工作液应为无色或浅棕色,如颜色过深,请勿使用;  

3. DAB在常温下不稳定,每次取用后均应及时加盖密封放回冰箱,以免因DAB分解影响实验,或因渗漏造成实验环境污染;  

4. DAB有潜在致突变作用,操作时应注意穿戴好防护用具。

更多详情请咨询上海金畔生物